常用基因组DNA提取方法
一、CTAB法
CTAB（十六烷基三甲、基溴化铵），是一种阳离子型表面活性剂，可溶解细胞膜使细胞裂解。在高盐溶液中（>0.7mol/L NaCl），CTAB可与蛋白质和中性多糖形成复合物而沉淀，不能沉淀核酸和酸性多糖，另外它还能保护DNA不受内源核酸酶的降解。CTAB法是植物基因组DNA最经典的提取方法。

CTAB裂解液组份及各组份的作用

1、Tris-HCl （pH8.0）提供一个缓冲环境，防止核酸被破坏；
2、EDTA螯合Mg2+或Mn2+离子，抑制DNase活性；
3、NaCl 提供一个高盐环境，使DNA充分溶解于液相中；
4、CTAB裂解细胞，沉淀蛋白和中性多糖；
5、PVP（聚乙、烯吡、咯烷酮）是酚的络合物，能与多酚形成一种不溶的络合物质，6、有效去除多酚，减少DNA中酚的污染；同时它对多糖的去除也有一定的作用；
7、β-巯基乙醇是抗氧化剂，有效地防止酚氧化成醌，避免褐变，使酚容易去除；
8、蛋白酶K用于生物样品中蛋白质的一般降解，将蛋白质降解成小肽或氨基酸，使DNA分子分离出来。

抽提DNA去除蛋白质时，怎样使用酚与氯、仿较好？

酚与氯、仿是非极性分子，水是极性分子，当蛋白水溶液与酚或氯、仿混合时，蛋白质分子之间的水分子就被酚或氯、仿挤去，使蛋白失去水合状态而变性。经过离心，变性蛋白质的密度比水的密度大，因而与水相分离，沉淀在水相下面，从而与溶解在水相中的DNA分开。而酚与氯、仿有机溶剂比重更大，保留在最下层。作为表面变性的酚与氯、仿，在去除蛋白质的作用中，各有利弊，酚的变性作用大，但酚与水相有一定程度的互溶，大约10％～15％的水溶解在酚相中，因而损失了这部分水相中的DNA，而氯、仿的变性作用不如酚效果好，但氯、仿与水互不相溶，不会带走DNA。所以在抽提过程中，混合使用酚与氯、仿效果最好。经酚第一次抽提后的水相中有残留的酚，由于酚与氯、仿是互溶的，可用氯、仿第二次变性蛋白质，此时一起将酚带走。也可以在第二次抽提时，将酚与氯、仿混合（1:1）使用。

为什么用酚与氯、仿抽提DNA时，还要加少量的异、戊醇？

在抽提DNA时，为了混合均匀，必须剧烈振荡容器数次，这时在混合液内易产生气泡，气泡会阻止相互间的充分作用。加入异、戊醇能降低分子表面张力，所以能减少抽提过程中的泡沫产生。一般采用氯、仿与异、戊醇为24:1之比。也可采用酚、氯、仿与异、戊醇之比为25:24:1（不必先配制，可在临用前把一份酚加一份24:1的氯、仿与异、戊醇即成），同时异、戊醇有助于分相，使离心后的上层水相，中层变性蛋白相以及下层有机溶剂相维持稳定。

乙醇沉淀和异丙醇沉淀各有哪些优缺点？

1、异丙醇
优点：所需体积小且速度快，适用于浓度低，而体积大 DNA 样品的沉淀。0.54~1.0倍体积的异丙醇可选择性沉淀DNA和大分子RNA；但对多糖产物不产生沉淀，一般不需要在低温条件下长时间放置；
缺点：易使盐类（如 NaCl、蔗糖）与DNA共沉淀；在DNA沉淀中异丙醇难以挥发除去，所以常规需要用70％的乙醇漂洗DNA沉淀数次。

2、乙醇
优点：对盐类沉淀少，DNA沉淀中所含的痕量乙醇易蒸发出去，不影响后续的实验；
缺点：是总体积较大，在适当的盐浓度下， 2倍样品体积的95％乙醇可有效沉淀 DNA需在-20度放置较长时间（30分钟-1小时）同样需要70%乙醇洗涤。

富含多糖多酚植物高质量基因组DNA提取的难点

多酚类物质极易被氧化成褐色物质醌类，醌能够形成游离的自由基，这种自由基能够引起磷酸二酯键的断裂，造成基因组DNA完整性的破坏以及序列长度的降低；多糖、单宁等物质和DNA的理化性质接近，容易和核酸共沉淀而与DNA结合成粘稠的胶状物，影响了DNA的质量和纯度，不能被限制性内切酶酶切，严重的甚至不能作为模板进行PCR扩增。

二、CTAB+过柱法
核酸纯化柱（Spin column）可以用于各种材料的DNA\RNA的提取以及精制。具有操作简单、回收率高、性能稳定等特点，目前产品已经为国内外大多数实验室和公司使用。核酸纯化柱（Spin column）采用硅胶膜作为核酸的特异性吸附材料，而对其他生物材料基本不吸附，可以保障最大、程度地回收样品中的DNA\RNA，同时去除其他杂质。对于杂质组份不清楚，杂质含量较多的样品，可考虑采用CTAB裂解，然后过柱纯化的方式进行提取，一般可显著改善提取样品的纯度。
三、SDS法
SDS（十二烷基硫酸钠）是一种阴离子型表面活性剂，可使细胞膜崩解，与膜蛋白疏水部分结合并使其与膜分离，高浓度的SDS还可以破坏蛋白质中的离子键和氢键等非共价键，甚至改变蛋白质的构象。SDS法适用于动物组织、血液、细胞、细菌和酵母等DNA的提取。

SDS裂解液组份及各组份的作用

四、环境微生物提取方法
环境微生物(Environmental microorganism)通常是指大量的、极其多样的存在于自然界的一大群体形微小、结构简单、肉眼直接看不见，必须借助光学显微镜或电子显微镜放大数百倍、数千倍，甚至数万倍才能观察到的微小生物。

环境微生物的分类

环境微生物种类繁多，因其分布环境的不同大致可分为以下种类：

土壤微生物类样品总DNA提取策略

1、直接提取法
直接利用各种化学或物理方法裂解土壤样品中的微生物再提取总DNA。优点是避免了一些微生物与土壤颗粒共沉淀，从而提高DNA产量，能更好的反映土壤微生物群落多样性；缺点在于提取的同时将土壤中有机成分（如腐殖酸等）溶出，影响了后续分析。

采用直接法的常用试剂盒：
Qiagen的DNeasy Powersoil Kit可用于土壤微生物总DNA提取；
Qiagen的QIAamp Stool Mini kit可用于粪便、肠内容物、生物固体总DNA提取。

2、间接提取法
先采用差速离心等物理方法将微生物从样品中分离出来，再用较温和的方法提取总DNA。缺点是有一些微生物因与土壤颗粒共沉淀而导致它们在后续分析过程中被“漏检”。

水体微生物类样品总DNA提取策略

1、过滤法
江河湖泊等自然水体中微生物的含量一般较低，为了提取足够量的DNA，需要对大体积水体中的微生物进行浓缩处理，一般采用0.22um滤膜过滤后，将过滤后的滤膜或者洗脱滤膜的缓冲液进行DNA提取。

2、离心法
对于培养的菌液等微生物含量较高的水体类样品，可采用离心法将菌体细胞沉淀下来后进行提取。一些生物液体如奶、脑脊液、胸腔液等也可用此方法进行微生物收集。

好的，以上就是常用基因组DNA提取方法，需要强调的是，上面提到的一些DNA提取方法及策略并不是一成不变的，在实际工作中我们可以根据所提取材料的不同、提取结果的差异，灵活调整实验方案，目的只有一个，提取到纯度高、完整性好、得率高的DNA样品，以满足我们后续的科研需求。

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